Санитарно-эпидемический режим в лаборатории. Инструкции по санитарно-противоэпидемическому режиму Санитарно эпидемиологический режим в клинико диагностической лаборатории

Памятка для сотрудников КДЛ

Клинико-диагностические, микробиологические и другие диагностические лаборатории должны размещаться в изолированных непроходных отсеках зданий. Размещение лабораторий, работающих с микроорганизмами III -IV группы патогенности, в жилых зданиях не допускается. На входной двери лаборатории, работающей с микроорганизмами III -IV группы патогенности, должны быть обозначены название (номер) лаборатории и международный знак "Биологическая опасность".

Лаборантская (в т.ч. гематологическая, биохимическая, эмбриологическая, гистологическая и др.)- 6 м 2 на каждое рабочее место, но не менее 12м 2 ;

Помещение приема и регистрации биоматериала для лабораторных исследований- 8 м 2 ;

Помещение взятия проб капиллярной крови - 4 м 2 на каждое рабочее место, но не менее 9 м 2

Лаборатория срочных анализов- 12 м 2

Автоклавная для обеззараживания-12 м 2
Лаборатория должна быть обеспечена холодным и горячим водоснабжением, канализацией, электричеством, отоплением и вентиляцией.На случай выхода из строя или проведения профилактического ремонта системы горячего водоснабжения в качестве резервного источника устанавливаюся водонагревательные устройства.

Все помещения лаборатории должны иметь естественное и искусственное освещение в соответствии с требованиями действующих нормативных документов.

Объемно-планировочные решения и размещение оборудования должны обеспечивать поточность движения исследуемого материала, персонала и выполнение требований санитарных правил.

Лаборатории должны иметь набор рабочих и вспомогательных помещений (комнат). Набор помещений и их оснащение оборудованием могут варьировать в зависимости от конкретных целей и задач лаборатории.

Помещения лабораторий разделяют на "заразную" зону, где осуществляются манипуляции с ПБА III - IV групп и их хранение, и "чистую" зону, где не проводят работы с микроорганизмами и их хранение.

Внутренняя отделка помещений должна быть выполнена в соответствии с их функциональным назначением и гигиеническими нормативами. Поверхность пола, стен, потолка в лабораторных помещениях должна быть гладкой, без щелей, устойчивой к многократному действию моющих и дезинфицирующих средств. Полы должны быть не скользкими, иметь гидроизоляцию.

Лабораторное оборудование и мебель должны быть гладкими, без острых краев и шероховатостей и иметь покрытие, устойчивое к действию моющих и дезинфицирующих средств.

В лабораторных помещениях должна быть предусмотрена защита рабочих столов от попадания прямого солнечного света. Для этих целей могут быть использованы светозащитная пленка, жалюзи из материала, устойчивого к воздействию дезинфицирующих растворов.

Помещения "заразной" зоны должны быть оборудованы бактерицидными облучателями для обеззараживания воздуха и поверхностей в соответствии с нормативами.

Для обеззараживания воздуха в помещениях с асептическим режимом следует применять разрешенные для этой цели оборудование и/или химические средства.

Технология обработки и режимы обеззараживания воздуха изложены в соответствующих нормативно-методических документах и инструкциях по применению конкретного дезинфекционного оборудования и дезинфицирующих средств.

С целью снижения обсемененности воздуха до безопасного уровня применяются следующие технологии:

Воздействие ультрафиолетовым излучением с помощью открытых и комбинированных бактерицидных облучателей, применяемых в отсутствии людей, и закрытых облучателей, в том числе рециркуляторов, позволяющих проводить обеззараживание воздуха в присутствии людей, необходимое число облучателей для каждого помещения определяют расчетным путем согласно действующим нормам;

Воздействие аэрозолями дезинфицирующих средств в отсутствие людей с помощью специальной распыливающей аппаратуры (генераторы аэрозолей) при проведении дезинфекции по типу заключительной и при проведении генеральных уборок;

Применение бактериальных фильтров, в том числе электрофильтров.

Длительность эффективного облучения воздуха в помещении во время непрерывной работы бактерицидной установки, при которой достигается заданный уровень бактерицидной эффективности, должна находиться для закрытых облучателей в пределах 1 - 2 ч, а для открытых и комбинированных - 0,25 - 0,5 ч.

Закрытые облучатели и приточно-вытяжная вентиляция в присутствии людей должны работать непрерывно в течение всего рабочего времени.

Боксированные помещения, микробиологические комнаты, помещения с аэрозольными камерами (установками) должны быть оборудованы автономными системами приточно-вытяжной вентиляции с механическим побуждением. Указанные системы оснащаются фильтрами тонкой очистки на выходе, проверяемыми на защитную эффективность.

В отдельных случаях для создания асептических условий в помещениях фильтрами тонкой очистки могут оснащаться и приточные системы вентиляции.

Эксплуатацию систем приточно-вытяжной вентиляции лабораторий (лабораторных зданий) должны осуществлять в соответствии с инструкцией, составленной на основании требований соответствующих нормативных документов.

Смена фильтров должна проводиться при нарушении параметров депрессионного режима (изменение скорости воздушных потоков, кратности воздухообмена), при повреждении фильтра (снижение сопротивления, увеличение коэффициента проскока), при повышении сопротивления фильтров на 50% и одновременно уменьшении скорости воздушного потока в боксирующих устройствах.

В условиях жаркого климата разрешается установка кондиционеров в рабочих комнатах и боксах при условии их выключения на время работы с ПБА (патогенные биологические агенты).

Транспортировка и хранение биоматериалов.
Доставка материала в лаборатории из сторонних организаций осуществляется через самостоятельный вход.

Диагностические лаборатории, проводящие исследования с ПБА III - IV групп, должны иметь 2 входа: один - для сотрудников, другой - для доставки материала на исследование. Допускается получение материала через передаточное окно.

Доставка в лабораторию материала для исследования осуществляется в контейнерах, биксах или в сумках-холодильниках. Доставляемые емкости с жидкими материалами должны быть закрыты пробками, исключающими выливание содержимого во время транспортирования. Дно контейнеров, содержащих емкости с ПБА, должно быть покрыто адсорбирующим материалом (марлевая салфетка, ткань, вата и пр.). Не допускается доставка материала в хозяйственных сумках, чемоданах, портфелях и других предметах личного пользования.

Прием и разборка доставленного материала (проб) должны проводиться с соблюдением мер предосторожности. Емкости с ПБА должны помещаться на поднос или лоток, покрытый многослойной марлевой салфеткой, смоченной дезинфицирующим раствором. Персонал должен использовать маску и резиновые перчатки.

При транспортировке биоматериал помещают в пробирки, закрывающиеся резиновыми пробками, сопроводительную документацию – в упаковку, исключающую возможность её загрязнения биоматериалом. Бланки направлений помещать в пробирку с кровью запрещается.

Транспортировка биоматериала осуществляются в закрытых контейнерах, подвергающихся дезинфекционной обработке.

При открывании пробок бутылок, флаконов, пробирок с кровью, плазмой или другими секретами следует не допускать разбрызгивания содержимого.

При хранении потенциально инфицированного материала в холодильнике необходимо поместить биоматериал в полиэтиленовый пакет.

В случае подтверждения зараженности биоматериала размораживание холодильника совмещают с его дезинфекцией.

Объём и вид дезинфекции определяются руководителем клинико-диагностической лаборатории.

Проведение работ в лаборатории

Сотрудники клинико-диагностических лабораторий подвергаются риску заражения СПИД, вирусным гепатитом, кишечными инфекциями и другими инфекционными заболеваниями. При этом следует иметь в виду, что в качестве главного фактора распространения выше названных заболеваний выступает кровь, мокрота, сперма, моча и другие секреты и экскреты организма человека. В клинико-диагностических лабораториях кровь и биологические жидкости должны считаться потенциально инфицированными.

Ответственность за организацию и соблюдение противоэпидемического режима при работе с потенциально опасным материалом возлагается на руководителя клинико-диагностической лаборатории.

В организации, работающей с ПБА, создается комиссия по контролю соблюдения требований биологической безопасности.

Работу с ПБА III-IV групп патогенности выполняют специалисты не моложе 18 лет с высшим и средним медицинским, биологическим, ветеринарным и иным образованием в соответствии с принятым каждым ведомством порядком замещения должностей, окончившие соответствующие курсы специализации с освоением методов безопасной работы с ПБА III-IV групп. Персонал лаборатории допускается к работе после проведения инструктажа по соблюдению требований биологической безопасности, Инструктаж среднего и младшего медицинского персонала проводится ответственным за технику безопасности не реже одного раза в квартал.

Медицинскому персоналу клинико-диагностических лабораторий следует избегать контакта кожи и слизистых оболочек с кровью и другими биологическими жидкостями, для чего необходимо:

• 
  Работать в медицинских халатах, шапочках, сменной обуви, а при угрозе забрызгивания кровью или другими биологическими жидкостями, в масках, очках, клеенчатых фартуках.
• 
  Перед использованием посуда, пипетки, оборудование, шприцы и т.д. должны быть проверены на целостность и исправность
• 
  При пипетировании необходимо пользоваться только резиновыми грушами или автоматическими устройствами.
• 
  Бактериологическая петля должна быть замкнута в непрерывное кольцо и иметь плечо длиной не более 6 см. Допускается использование одноразовых промышленно изготовленных петель с большей длиной плеча.
• 
  Работать с исследуемым материалом в резиновых перчатках, все повреждения кожи на руках должны быть закрыты лейкопластырем или напальчником. Избегать уколов и порезов.
• 
  Проводить разборку, мойку, прополаскивание лабораторного инструментария, посуды после предварительной дезинфекции в резиновых перчатках.
• 
  Поверхность рабочих столов в конце каждого рабочего дня, а в случае загрязнения биологическим материалом немедленно, подвергается дезинфекции
• 
  Сотрудники лабораторий должны быть обеспечены рабочей одеждой: медицинскими халатами, пижамами (комбинезонами), шапочками, сменной обувью и средствами индивидуальной защиты в зависимости от характера выполняемых работ и в соответствии с действующими нормами.
• 
  Рабочая одежда и обувь должны быть индивидуальными, соответствовать размерам работающих и храниться отдельно от личной одежды.
• 
  При работе с кровью дополнительно используется защитный экран или очки.
• 
  Работа с использованием вредных химических веществ (фиксирование материала, розлив формалина, концентрированных кислот, приготовление реактивов, прокаливание выжигание, измельчение) должны проводиться в вытяжном шкафу.
• 
  Летучие химические вещества хранятся в отдалении от нагревательных приборов и открытого огня. Хранение ядовитых веществ осуществляется в специальных кладовых, в металлических шкафах или сейфах. Кислоты и щелочи хранятся в стеклянной закрытой посуде на нижних полках шкафов отдельно от реактивов и красок. При разбавлении концентрированных кислот во избежание разбрызгивания кислоту добавляют в воду (а не наоборот). Для розлива из емкостей объемом 10-20 л в мелкую тару применяются средства малой механизации (опрокидыватели, сифоны).
• 
  Смена рабочей одежды должна проводиться по мере загрязнения, но не реже 1 раза в неделю.
• 
  Запрещается принимать пищу, пить, курить и пользоваться косметикой на рабочем месте. Прием посетителей, хранение пищевых продуктов, прием пищи разрешается только в специально отведенных местах в "чистой" зоне лаборатории.

В "заразной" зоне лаборатории не допускается:

• 
  оставлять после окончания работы на рабочих местах нефиксированные мазки или посуду с ПБА;
• 
  пипетировать ртом, переливать жидкий инфекционный материал через край сосуда (пробирки, колбы, флакона и др.);
• 
  хранить верхнюю одежду, головные уборы, обувь, зонты, хозяйственные сумки, косметику и т.п., а также продукты питания;
• 
  курить, пить воду;
• 
  оставлять рабочее место во время выполнения любого вида работ с ПБА;
• 
  сливать жидкие отходы (инфицированные жидкости, исследуемый материал и т.д.) в канализацию без предварительного обеззараживания;
• 
  удалять необеззараженные сгустки крови из пробирок, флаконов вытряхиванием.

Допускается в одном и том же помещении поочередное проведение диагностических и экспериментальных исследований после проведения дезинфекции помещения, приборов и оборудования.

При приеме на работу, связанную с использованием ПБА III - IV групп, персонал должен проходить предварительный медицинский осмотр с целью выявления медицинских противопоказаний к вакцинопрофилактике, лечению специфическими препаратами и применению средств индивидуальной защиты. Объем и порядок проведения медосмотра определяются действующими нормативными документами.

У сотрудников лабораторий, проводящих серологические исследования на ВИЧ-инфекцию и гепатиты B и C, ежегодно проводятся контрольные исследования на наличие соответствующих антигенов (антител) в сыворотке крови.

Сотрудники, работающие с кровью (сывороткой, плазмой крови), должны быть иммунизированы против вирусных гепатитов, а выполняющие исследования на энтеровирусы - против полиомиелита.

Все сотрудники должны проходить периодические медицинские осмотры в соответствии с нормативными документами.
Дезинфекция лабораторного инструментария, посуды, спецодежды, биоматериала, оборудования.

Методы и средства обеззараживания определяются в каждом отдельном случае в зависимости от характера обеззараживаемого материала.

При проведении дезинфекции предпочтение следует отдавать физическому методу вследствие его надежности и безопасности для персонала.

Дезинфекции способом кипячения подвергают посуду, в том числе лабораторную, белье, защитную одежду персонала, перчатки резиновые, резиновые шланги, пробки, груши для пипетирования зараженного материала, инструменты после вскрытия лабораторных животных, жидкие отходы, смывные воды, уборочный материал, и др.

Паровым методом обеззараживают посуду лабораторную, защитную одежду персонала, бактериологические посевы, воздушные бактериальные фильтры, жидкие отходы, смывные воды.

Дезинфекции воздушным методом подвергают лабораторную посуду из стекла, металлов, силиконовой резины без упаковки. Этим методом дезинфицируют посуду, не загрязненную органическими веществами.

С использованием дезинфицирующих средств проводят обеззараживание, поверхностей в помещениях, мебели, оборудования, защитной одежды персонала, белья, перчаток резиновых, очков, обуви, посуды лабораторной (пипетки, пробирки, колбы, чашки Петри, предметные стекла, гребенки для сушки культур, шприцы и др.), инструментов, воздушных фильтров, жидких отходов, смывных вод, санитарно-технического оборудования, уборочного материала.

Для дезинфекции применяют средства, содержащие в качестве действующих веществ (ДВ) активный кислород (перекисные соединения и др.), катионные поверхностно-активные вещества (КПАВ), хлорактивные соединения, альдегиды, спирты (этанол, пропанол и др.) чаще всего в виде многокомпонентных рецептур, содержащих одно или несколько ДВ и функциональные добавки (антикоррозионные, дезодорирующие, моющие и др.).

Режимы дезинфекции различных объектов, контаминированных возбудителями III - IV групп патогенности (бактериями, включая микобактерии, вирусами, грибами и спорами бацилл), дезинфицирующими средствами приведены в инструкциях по их применению.

Выбор дезинфицирующего средства определяется спецификой объектов, подлежащих обеззараживанию, и целевым назначением средства.

При проведении текущей и генеральной уборок с применением растворов ДС поверхности в помещениях, приборов, оборудования и др. дезинфицируют способом протирания тканевой салфеткой или ветошью, смоченными раствором ДС. Для этих целей целесообразно использовать дезинфицирующие средства с моющим эффектом. При необходимости экстренной обработки в течение рабочего дня небольших по площади или труднодоступных поверхностей возможно применение готовых форм ДС, например, на основе спиртов, для которых характерно короткое время воздействия, с помощью ручных распылителей или способом протирания растворами ДС, нанесенными на ветошь, или готовыми к применению дезинфицирующими салфетками. Применение ДС с моющими свойствами позволяет объединить обеззараживание объекта с его мойкой, поэтому при проведении текущих и генеральных уборок применяют ДС, обладающие моющим действием.

Для дезинфекции выделений (фекалии, мокрота и др.) и посуды из-под выделений используют в основном хлорактивные средства.

Для дезинфекции спецодежды и белья используют средства, не содержащие альдегидов, спиртов.

Для дезинфекции изделий медицинского назначения и лабораторной посуды применяются средства на основе альдегидов, катионных поверхностно-активных веществ, перекиси водорода, хлорсодержащие средства. Дезинфекцию изделий и посуды проводят способом погружения в раствор дезинфицирующего средства. Разъемные изделия дезинфицируют в разобранном виде. Каналы и полости изделий заполняют дезинфицирующим раствором.

Обеззараживание медицинских отходов классов Б и В (белье, маски, спецодежда, салфетки, изделия медицинского назначения однократного применения и др.) перед утилизацией осуществляют в местах их образования способом погружения в растворы ДС в соответствии с санитарными правилами и нормами "Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений". Для дезинфекции медицинских отходов применяют химический и физический методы обеззараживания по режимам, обеспечивающим гибель соответствующих возбудителей. Дезинфекция выделений, крови, мокроты и др. проводится также сухими хлорактивными ДС (хлорная известь, кальция гипохлорит нейтральный и пр.). Возможно одновременное обеззараживание и утилизация медицинских отходов с использованием установок, разрешенных к применению в установленном порядке.

В лаборатории должен храниться как минимум недельный запас дезинфицирующих средств.

Дезинфицирующие растворы готовят в специально отведенных помещениях или вытяжном шкафу. На емкости с дезинфицирующим раствором должны быть указаны его название, концентрация и дата приготовления.

Автоклавирование проводится персоналом, имеющим свидетельство об окончании специальных курсов.

Контроль работы паровых и воздушных стерилизаторов, используемых для обеззараживания материалов, проводят согласно действующим инструктивно-распорядительным и методическим документам физическим, химическим и биологическим методами.

Бактериологический контроль работы стерилизаторов проводят после монтажа и ремонта аппаратуры, а также в процессе его эксплуатации (плановый - 2 раза в год и при получении неудовлетворительных результатов контроля).

Перенос материала для обеззараживания внутри подразделения проводится в специальных емкостях (баках, ведрах, биксах с крышками).

Обеззараживание материала и дезинфекция помещений.

Банки с фекалиями, желчью, мокротой и т. п. помещают в эмалированные кюветы или на отдельные столы стационарные или передвижные (с пластиковым или другим легко поддающимся дезинфекции покрытием).

Пробирки с кровью устанавливают в штативы, помещенные в эмалированные, пластиковые кюветы.

При отсутствии пластикового покрытия на столах для микроскопии используют легко поддающиеся дезинфекции стеклянные, металлические, пластиковые пластины или эмалированные кюветы, где раскладывают мазки, препараты, материал для исследования.

Отработанные предметные стекла, пипетки, пробки, пробирки, стеклянные палочки, химические стаканчики и т. п. складывают в течение рабочего дня в емкости с дезинфицирующим раствором до полного вертикального погружения для предварительного обеззараживания.

Заключительное обеззараживание лабораторной посуды проводится путем кипячения в воде (с момента закипания не менее 30 мин) с добавлением хозяйственного мыла или жидкого моющего средства. При соответствующих условиях можно использовать автоклавирование. После дезинфекции посуда допускается для мытья и стерилизации.

Ватно-марлевый материал, бумажные фильтры и разовые деревянные палочки уничтожаются путем сжигания или выброса в контейнер для мусора после экспозиции в одном из дезинфицирующих растворов, или предварительно засыпаются сухим порошком хлорной извести или хлорамина.

Пробы фекалий, мокроты, желчи, мочи засыпаются сухой хлорной известью или белильной термостойкой известью, или хлорамином перед выбросом в контейнеры или сливом в общую канализационную систему (при соответствующих условиях для обезвреживания используют автоклавирование).

Полистироловые планшеты, наконечники, микропробирки, пробирки, пипетки и др., используемые при работе с кровью или сывороткой крови, обеззараживаются в 6 %- ном растворе перекиси водорода с экспозицией 3 ч в термостате при 50 °С. После этого промывают под проточной водой, затем промывают 3-5 мин в дистиллированной воде и высушивают в термостате при 50 °С в течение 15 мин.

Сгустки крови и сыворотку крови перед утилизацией в общую канализационную сеть обезвреживают только с применением дезинфицирующих растворов (в соответствии с действующими инструкциями по обеззараживанию).

Рабочие поверхности лабораторных столов обеззараживают.

Дезинфекционная обработка оборудования (центрифуги, микроскопы, холодильники и др.) проводится раствором 70 % спирта или с применением соответствующих дезсредств. По окончании работ медицинский персонал должен обработать руки дезинфицирующим раствором или 70% спиртом с последующим мытьем с мылом. Допускается использование кожных антисептиков в соответствии с инструкциями по применению.
Предстерилизационная очистка.

После дезинфекции лабораторный инструментарий, соприкасающийся с раневой поверхностью или слизистыми оболочками обследуемого подлежит обязательной предстерилизационной очистке и стерилизации. Предстерилизационную очистку проводят с применением моющих растворов.

Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают на наличие крови путём постановки бензидиновой или амидопириновой проб; на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства ставится фенолфталеиновая проба.

Самоконтроль в клинико-диагностических лабораториях проводится ежедневно, контролю подвергают не менее 1% от одновременно обработанных изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц.

При положительной пробе на кровь или моющее средство всю группу контролируемых изделий подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов.

Стерилизация.

После дезинфекции и предстерилизационной очистки проводят стерилизацию игл, шприцев, пробирок, пипеток, стеклянных палочек, стекол, меланжеров и т.д.

Санитарное содержание помещений.

Все помещения, оборудование, инвентарь должные содержаться в идеальной чистоте.

Текущая уборка помещений проводится ежедневно влажным способом после окончания рабочего дня: в "чистой" зоне лаборатории с применением моющих средств, в "заразной" зоне с применением дезинфектантов. При дезинфекции объектов, загрязненных кровью и другими биологическими субстратами, представляющими опасность в распространении парентеральных вирусных гепатитов и ВИЧ-инфекции, следует руководствоваться действующими инструктивно-методическими документами и применять ДС по противовирусному режиму.

В боксовых помещениях проводится еженедельная генеральная уборка помещений с применением дезинфицирующих средств. Поверхности в помещениях, аппараты, приборы протирают дезинфицирующим раствором, стены обрабатывают на высоту до 2 метров. После влажной уборки включают бактерицидные лампы. Эксплуатация бактерицидных облучателей должна осуществляться в соответствии с действующими методическими документами по применению бактерицидных ламп для обеззараживания воздуха и поверхностей в помещениях, утвержденными в установленном порядке. На помещения с бактерицидными установками должен быть оформлен акт ввода их в эксплуатацию и заведен журнал регистрации и контроля.

Стеклянные поверхности бактерицидных ламп следует протирать в выключенном положении ветошью, смоченной спиртом, не реже 1 раза в неделю.

Уборочный инвентарь должен быть промаркирован отдельно для "чистой" и "заразной" зон. Перенос его из одной зоны в другую не допускается.

Влажная уборка помещений должна осуществляться не менее одного раза в сутки, а при необходимости чаще с применением моющих средств и дезинфекции.

Один раз в месяц в помещениях, где проводится работа с кровью, сывороткой делают генеральную уборку с использованием 3% раствора хлорамина, хлорной извести, извести белильной термостойкой.

Во время генеральной уборки тщательно моются стены, оборудование, мебель, проводится очистка полов от наслоений, пятен и т.д.

Генеральные уборки проводятся по утвержденному графику.

Помещения лабораторий должны быть непроницаемы для грызунов и насекомых.

Лабораторные помещения должны быть оборудованы пожарной сигнализацией и обеспечены средствами пожаротушения в соответствии с требованиями пожарной безопасности.

Порядок действий по ликвидации аварий

На случай аварии, при которой создается реальная или потенциальная возможность выделения патогенного биологического агента в воздух производственной зоны, среду обитания человека и заражения персонала, в подразделениях, где ведут работы с ПБА, должен быть план ликвидации аварии, запас дезинфицирующих средств, активных в отношении возбудителей, с которыми проводят исследования.

В состав аварийной аптечки входит: спирт этиловый 70% (два флакона по 100 мл), 2 - 3 навески перманганата калия для приготовления 0,05% раствора (0,0125 г перманганата калия + 25 мл воды), стерильная дистиллированная вода, 5% настойка йода, ножницы с закругленными браншами, перевязочные средства (вата, бинты и пр.), жгут и нашатырный спирт.

Кроме выше перечисленного, в аптечке вирусологической лаборатории должны быть 1% раствор борной кислоты, интерферон или индуктор интерферона; в аптечке микологической лаборатории - 1% раствор борной кислоты или навески для приготовления раствора (0,25 г борной кислоты + 25 мл воды).

В случае загрязнения кожных покровов кровью или другими биологическими жидкостями следует немедленно обработать их в течение 2-х минут тампоном, обильно смоченным 70 0 спиртом, вымыть под проточной водой с мылом и вытереть индивидуальным полотенцем. При загрязнении перчаток кровью их протирают тампоном, смоченным 3% раствором хлорамина, 6% раствором перекиси водорода.

При подозрении попадания крови на слизистые оболочки, их немедленно обрабатывают струей воды, 1% раствором борной кислоты или вводят несколько капель азотнокислого серебра; нос обрабатывают 1% раствором протаргола; рот и горло прополаскивают 70 0 спиртом или 1% раствором борной кислоты или 0,05% раствором марганцево-кислого калия.

Приказом министерства здравоохранения Саратовской области от 2 июля 2013г № 654 «О мероприятиях по предупреждению профессиональных заражений ВИЧ инфекцией медицинского персонала учреждений здравоохранения области» предусмотрен следующий состав аварийной аптеки и мероприятия:

медицинской помощи

1. Йод 5 % спиртовой раствор 1флакон.

2. Спирт этиловый 70 % 100,0мл.

3. Пластырь бактерицидный 1- 2шт. на одного сотрудника режимного кабинета.

4. Салфетка антисептическая для инъекций - 2шт. на одного сотрудника режимного

кабинета для обработки места укола.

5. Напалечники 1-2шт. на одного сотрудника режимного кабинета.

Кроме выше перечисленного, в аптечке вирусологической лаборатории должны быть 1 %

раствор борной кислоты, интерферон или индуктор интерферона.

Аптечка и инструктивно-методическая документация должны храниться в легкодоступном месте. Контроль правильности хранения и пополнения аптечки возлагается на заведующих отделениями или назначенных ими лиц.

Действия медицинского работника при аварийных ситуациях

При возникновении аварийной ситуации необходимо сразу же оказать пострадавшему

первую медицинскую помощь.

В случае порезов и уколов кожи:

Снять перчатки (при сильном загрязнении перчаток биологическим материалом перед

снятием перчатки обработать дезинфицирующим средством), руки обработать 70 %

раствором йода.

При попадании крови или других биологических жидкостей на кожные покровы:

Обработать кожу 70 % спиртом, обмыть водой с мылом и повторно обработать 70 %

При попадании крови и других биологических жидкостей пациента на слизистую глаз, носа и рта:

Ротовую полость промыть большим количеством воды и прополоскать 70 % раствором

этилового спирта; слизистую оболочку носа и глаза обильно промывают водой (не тереть).

При попадании крови и других биологических жидкостей пациента на халат, одежду:

рабочую одежду и погрузить в дезинфицирующий раствор;

кожу рук и другие участки тела под загрязненной одеждой протереть 70 % спиртом;

снять и обеззаразить перчатки.

Обувь обрабатывают двукратным протиранием ветошью, смоченной в растворе одного из

дезинфицирующих средств.

При попадании биологического материала на пол, стены, мебель, оборудование и

другие окружающие предметы: залить загрязненное место любым дезинфицирующим

раствором по режиму вирусных гепатитов.

При аварии во время работы на центрифуге:

крышку медленно открывают только через 30-40мин. (после оседания аэрозоля). Центрифужные стаканы и разбитое стекло помещают в дезинфицирующий раствор, поверхность крышки, внутренние части центрифуги, ее наружную поверхность дезинфицируют. Дезинфекция центрифуги проводится после отключения ее от электросети. Мероприятия проводятся в средствах индивидуальной защиты (маска, очки, перчатки, халат, шапочка). В помещении, где произошла авария, проводится заключительная дезинфекция.

О несчастном случае (порез, прокол, попадание биоматериала на слизистые, авария на

центрифуге) пострадавший медицинский работник должен сразу же сообщить

ответственному за осуществление мероприятий по профилактике ВИЧинфекции

и инженеру по охране труда учреждения. Осуществить запись в журнале регистрации аварийных ситуаций.

ВОЛОГОДСКИЙ ОБЛАСТНОЙ ЦЕНТР ГОСУДАРСТВЕННОГО САНИТАРНО-ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКОГО НАДЗОРА

ПОСТАНОВЛЕНИЕ

О ВВЕДЕНИИ В ДЕЙСТВИЕ ОБЛАСТНЫХ САНИТАРНЫХ ПРАВИЛ "САНИТАРНО-ГИГИЕНИЧЕСКИЙ, ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКИЙ РЕЖИМ В КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРИЯХ"

В 1995 - 1996 годах в Вологодской области регистрируется повышение уровня заболеваемости парентеральными вирусными гепатитами, сифилисом, выявлены случаи заболеваний ВИЧ-инфекцией. В 1995 году в Шекснинском районе зарегистрирована крупная внутрибольничная вспышка заболеваний вирусными гепатитами с парентеральным механизмом передачи.

В целях охраны здоровья и обеспечения санитарно-эпидемиологического благополучия населения, на основании ст. 38 "Закона РФ "О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения", "Положения о государственном санитарно-эпидемиологическом нормировании" , утвержденного постановлением Правительства Российской Федерации от 05.06.1994 N 625 , Вологодский областной центр государственного санитарно-эпидемиологического надзора постановляет:

2. Распространить действие областных санитарных правил "Санитарно-гигиенический, противоэпидемический режим в клинико-диагностических лабораториях" на все виды лечебно-профилактических учреждений, предприятий, независимо от форм собственности.

Первый зам. главного врача центра
Госсанэпиднадзора в Вологодской области
Первый зам. главного государственного
санитарного врача по Вологодской области
И.А.КУЗНЕЦОВА

Утверждены
Постановлением
Центра госсанэпиднадзора
в Вологодской области
от 28 мая 1997 года N 1-10/3

САНИТАРНЫЕ ПРАВИЛА САНИТАРНО-ГИГИЕНИЧЕСКИЙ, ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКИЙ РЕЖИМ В КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРИЯХ

САНИТАРНЫЕ ПРАВИЛА СП 3.1.6.002-97

Санитарно-гигиенический и противоэпидемический режим в клинико-диагностических лабораториях. Санитарные правила.

1. Разработаны центром государственного санитарно-эпидемиологического надзора в Вологодской области (Лесникова Л.В., Медведева Л.В., Кузьмина Т.Н., Литвинова Р.Г.).

2. Утверждены и введены в действие Постановлением центра государственного санитарно-эпидемиологического надзора в Вологодской области от 28.05.1997 N 1-10/3.

3. Введены впервые.

1. Область применения.

Санитарные правила по санитарно-гигиеническому и противоэпидемическому режиму в клинико-диагностических лабораториях устанавливают требования по защите пациентов и персонала лечебно-профилактических учреждений от заражения инфекциями передающимися парентеральным механизмом передачи; обеспечению безопасных условий оказания медицинской помощи населению.

Настоящие санитарные правила предназначены для специалистов лечебно-профилактических и санитарно-гигиенических учреждений.

2.1. Закон РСФСР "О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения" от 19.04.1991.

2.2. "Основы законодательства Российской Федерации об охране здоровья граждан " от 18.06.1993.

2.3. Приказ МЗ СССР от 12.07.1989 N 408 "О мерах по снижению заболеваемости вирусными гепатитами в стране" .

2.4. "Санитарные правила устройства, оборудования и эксплуатации больниц, родильных домов и других лечебных стационаров" от 20.06.1990 N 5179-90.

2.5. Отраслевой стандарт "Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения", утвержденный приказом МЗ СССР 10.06.1985 N 770 .

2.6. Приказ МЗ СССР от 14.04.1979 N 215 "О мерах по улучшению организации и повышению качества специализированной медицинской помощи больным гнойными хирургическими заболеваниями" .

2.7. Методические указания по контролю работы паровых и воздушных стерилизаторов, утвержденные МЗ СССР 28.02.1991 N 15/6-5.

2.8. "Инструкция по мерам профилактики распространения инфекционных заболеваний при работе в клинико-диагностических лабораториях ЛПУ" МЗ СССР от 1991 г.

3. Общие положения.

С целью профилактики инфицирования медицинского персонала, пациентов персоналу клинико-диагностических лабораторий необходимо выполнять требования противоэпидемического режима.

Следует иметь в виду, что специалисты клинико-диагностических лабораторий работают с биологическим материалом, в т.ч. от инфекционных больных и от больных с неустановленным диагнозом. Поэтому кровь, мокрота, моча, кал, сперма и др. секреты и экскременты организма человека в клинико-диагностических лабораториях должны считаться потенциально инфицированными.

Ответственность за организацию и соблюдение противоэпидемического режима при работе с потенциально опасным материалом возлагается на руководителя клинико-диагностической лаборатории.

2 раза в год со специалистами лаборатории проводится инструктаж лицом, ответственным за технику безопасности с отметкой в журнале.

4. Основные правила работы.

4.1. Уборка всех помещений лаборатории производится до начала и после окончания работы с использованием дезинфицирующих средств. Поверхности лабораторных столов, оборудование протираются 3% раствором хлорамина, хлорной извести, или 6% перекисью водорода, 0.5% ДП-2, пол моется с использованием 1% раствора хлорамина, хлорной извести. Один раз в месяц в помещениях, где проводится работа с нативной кровью, сывороткой, делают генеральную уборку с использованием 3% раствора хлорамина (хлорной извести). Во время генеральной уборки тщательно моются стены, оборудование, мебель, проводится очистка полов от пятен с помощью моющего раствора (50 г моющего средства на 10 л раствора), затем те же объекты увлажняются (или орошаются) дезинфекционным раствором. Через 1 час дезинфекционный раствор смывается чистой водой.

4.2. Персонал должен работать в специальной одежде (халат, сменная обувь, при работе с нативным материалом - в перчатках, при опасности разбрызгивания крови или других биологических жидкостей следует работать в масках).

4.3. Запрещается принимать пищу, пить, курить, пользоваться косметикой в рабочих помещениях клинико-диагностических лабораторий.

4.4. Каждый специалист клинико-диагностической лаборатории должен иметь индивидуальное полотенце для рук, сменяемое ежедневно, медицинский халат, меняющийся не реже 2 раз в неделю, в случаях загрязнения - немедленно.

4.5. Специальную одежду перед стиркой дезинфицируют, замачивая в 1% растворе хлорамина или 3% растворе перекиси водорода с 0.5% моющим средством (температура раствора 50 градусов C), на 3 часа или автоклавируются при температуре 120 градусов C +2, давлении 1.1 кг с/кв. см (0.1 МПа) в течение 45 минут. Пятна крови, попавшие на специальную одежду сразу же дезинфицируют 3% раствором хлорамина, промывают через 2 часа. Стирка халатов и другой специальной одежды на дому категорически запрещается.

4.6. Иглы, капилляры, предметные стекла, пробирки, меланжеры, кюветы фотоэлектрокалориметров, пипетки, наконечники, другая лабораторная посуда и инструменты после каждого использования подлежат дезинфекции в соответствии с приказом МЗ СССР от 12.07.1989 N 408 . Исключение составляют инструменты, используемые только для дозировки химических реактивов, не соприкасающиеся с биологическим материалом, которые следует обрабатывать в соответствии с технологическими требованиями.

4.7. Инструменты, загрязненные кровью, сывороткой перед дезинфекцией, подлежат предварительному промыванию в дезинфицирующем растворе той же концентрации. При дезинфекции изделий, имеющих внутренние каналы, раствор дезинфицирующего средства в объеме 5 - 10 мл пропускают через канал для удаления остатков крови, сыворотки и заполняют канал этим же раствором с помощью груши.

4.8. Емкости для проведения дезинфекции должны быть четко маркированы (указывается название дезинфицирующего раствора, его концентрация, дата приготовления).

4.9. В качестве дезинфицирующих растворов для изделий, указанных в п. 4.6 используются: 3% раствор хлорамина, хлорной извести, 6% перекиси водорода, 0.5% раствор ДП-2, экспозиция 60 минут.

Дезинфицирующий раствор меняется по мере загрязнения, но не реже 1 раза в сутки.

4.10. Предметные стекла с фиксированным и окрашенным мазком после проведения микроскопии, подлежат дезинфекции в 6% растворе перекиси водорода 60 мин., и необходимой технологической обработке.

4.11. Остатки крови, мочи, других биологических жидкостей после исследования подлежат дезинфекции в специальной таре. Дезинфекция производится методом засыпания сухой хлорной известью, (нейтральным гипохлоритом кальция) в соотношении препарата и отходов 1:5 с экспозицией 60 мин.

4.12. При удалении сгустков крови следует предварительно отделить материал от пробирки металлическим или из другого материала, подвергающегося дезинфекции, шпателем, который затем обеззараживается погружением в 3% раствор хлорамина на 1 час.

4.13. После дезинфекции лабораторный инструментарий, соприкасающийся с раневой поверхностью или слизистыми оболочками подлежит предстерилизационной обработке, стерилизации. Посуда, соприкасающаяся с кровью или сывороткой и не предназначенная для последующего контакта с обследуемым, после дезинфекции промывается под проточной водой и проходит необходимую технологическую обработку.

4.14. Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки азопирамовой (амидопириновой) пробы на наличие скрытой крови, фенолфталеиновой - на наличие остаточного количества моющего средства ежедневно. Контролю подлежит 1% обработанного инструментария, но не менее 3 - 5 единиц.

4.15. При положительной пробе на кровь или моющее средство, всю группу контролируемых изделий подвергают повторной обработке.

4.16. Результаты контроля качества предстерилизационной обработки фиксируются в "Журнале учета предстерилизационной обработки" по ф. 366у, утвержденной Приказом МЗ СССР N 1030 от 04.10.1980 .

4.17. Блоки кювет - анализатора ФП, кюветы измерительной аппаратуры, пластиковые пробирки обеззараживаются только 6% раствором перекиси водорода и промываются проточной водой.

5. Требования противоэпидемического режима при взятии крови.

Взятие крови проводится в резиновых перчатках с соблюдением правил асептики.

5.1. Обработка рук в перчатках между работой с разными пациентами проводится путем погружения рук в перчатках на 2 мин. в 3% раствор хлорамина или тщательного в течение 2-х мин. протирания ватным тампоном, смоченным 3% раствором хлорамина. Затем руки в перчатках промываются под проточной водой с мылом и обрабатываются ватным тампоном, смоченным 70% спиртом.

5.2. По окончании работы перчатки дезинфицируются путем погружения в 3% раствор хлорамина или 6% раствор перекиси водорода на 1 час.

5.3. Смена перчаток производится ежедневно. При загрязнении перчаток кровью или другими биологическими материалами в процессе работы место загрязнения протирается дезинфекционным раствором (3% хлорамин, 6% раствор перекиси водорода) в течение 2 минут.

5.4. Перед проколом кожа пальца обследуемого обрабатывается стерильным ватным тампоном, смоченным 70% спиртом. После взятия крови к месту протокола прикладывается новый стерильный тампон, смоченный 70% спиртом.

5.5. Отработанные тампоны подлежат дезинфекции в 3% растворе хлорамина (хлорной извести), 0.5% растворе ДП-2, 0.5% растворе сульфохлорантина в течение 2-х часов.

5.6. Стерильные тампоны хранятся в упаковке, разрешенной ОСТом 42-21-2-85, в количестве не более 20 штук в одной упаковке.

5.7. Стерильные капилляры хранятся в упаковке, разрешенной ОСТом 42-21-2-85 в количестве, необходимом для работы в течение 2-х часов или на стерильном столе в течение 6 часов.

5.8. Извлечение капилляров из упаковки проводится только с помощью стерильного пинцета, сменяемого через каждые 2 часа.

5.9. При работе с кровью, сывороткой необходимо пользоваться резиновыми грушами или автоматическими пипетками. Насасывание крови, сыворотки ртом не допускается.

6. Транспортировка и хранения биоматериала.

6.1. Транспортировка биоматериала, помещенного в пробирки или флаконы, осуществляется в специальных емкостях (контейнеры, стерилизационные коробки) с закрывающимися крышками. Емкости для транспортировки должны быть сделаны из материалы, выдерживающего дезинфекцию.

6.2. Не допускается перевозка материала в сумках, портфелях и др. предметах личного пользования. Оптимальной считается доставка биоматериала в сумках - холодильниках, термоконтейнерах.

6.3. Пробирки (флаконы) с биоматериалом должны быть герметично закрыты резиновыми или ватно - марлевыми, обернутыми полиэтиленовой пленкой, пробками.

6.4. Поступающий материал, должен сопровождаться направлением. Бланки направлений помещать в пробирку с биоматериалом запрещается.

6.5. При хранении потенциально опасного биоматериала в холодильнике, необходимо поместить его в полиэтиленовый пакет.

7. Центрифугирование исследуемого материала.

Центрифугирование исследуемого материала проводят в комнатах, предназначенных для подготовки сывороток к серологическим реакциям. Центрифугу обязательно закрывают крышкой. После окончания центрифугирования (после полной остановки ротора) сотрудник открывает крышку центрифуги, вынимает пробирки, убеждается в их целостности. В случае подозрения на разрыв пробирки с исследуемым материалом крышку снимают не ранее чем через 40 мин. после остановки ротора. Гнездо с разбитой пробиркой заливают 3% раствором хлорамина, хлорной извести, 0.5% ДП-2 на 60 мин. Затем удаляют содержимое гнезда, сбрасывают в один из вышеуказанных дезинфицирующих растворов, протирают марлевой салфеткой, смоченной в дезинфицирующем растворе. После окончания центрифугирования во всех случаях ротор, стенки, крышку центрифуги протирают одним из дезинфицирующих растворов.

8. Меры в случае аварии.

8.1. Все рабочие места должны быть обеспечены дезинфицирующими растворами и аптечкой. В аптечку входит 70% спирт, 1% спиртовой раствор йода, перевязочный материал, навеска марганцово-кислого калия и соответствующее количество дистиллированной воды для приготовления 0.05% раствора, 1% раствор азотно - кислого серебра, 1% раствор протаргола, лейкопластырь.

8.2. О каждом аварийном случае немедленно сообщить руководителю лаборатории (его заместителю).

8.3. При попадании биологического материала на халат, одежду - это место немедленно обработать одним из дезинфектантов по соответствующему режиму. Затем обеззаразить перчатки, снять халат и замочить в одном из дезинфицирующих растворов или сложить в стерилизационные коробки для автоклавирования. Обувь обрабатывают двукратным протиранием ветошью, смоченной в растворе одного из дезинфектантов (3% раствор хлорамина, хлорной извести, 0.5% ДП-2, 6% перекись водорода, экспозиция 2 часа). Кожу рук и других участков тела под загрязненной одеждой протирают 70% спиртом.

8.4. При попадании биологического материала на лицо его тщательно моют мылом, глаза промывают водой или раствором марганцово-кислого калия в разведении 1:10000.

8.5. При попадании биологического материала в рот, ротовую полость прополаскивают 70% спиртом.

8.6. При повреждении кожи (порез, укол) из поврежденной поверхности выдавить кровь, кожу обработать 80% спиртом, затем йодом.

8.7. При попадании биологического материала на пол, стены, мебель, оборудование - загрязненное место заливают 3% раствором хлорамина (хлорной извести), 6% раствором перекиси водорода, 0.5% раствором ДП-2 на 1 час. Затем, протирают ветошью, смоченной в одном из указанных дезинфицирующих растворов. Используемую ветошь сбрасывают в емкость с дезинфицирующим раствором или в емкость для последующего автоклавирования.

8.8. Инструкция по мерам, в случае аварии, должна находиться на рабочем месте, иметь поверхность, позволяющую влажность уборку.

9. Контроль за дезинфекционными и стерилизационными мероприятиями.

9.1. Контроль за качеством дезинфекционных и стерилизационных мероприятий в клинико-диагностических лабораториях ЛПУ осуществляется специалистами лаборатории в объемах:

Качество предстерилизационной очистки лабораторного инструментария контролируется ежедневно (смотри п. 4.14);

Качество стерильности лабораторного инструментария контролируется не реже 1 раза в месяц.

Работа в лаборатории сопряжена с неизбежным контактом персонала с биоматериалом, что приводит к риску инфицирования. В этой связи в лаборатории выполняется комплекс противоэпидимических мероприятий. В своей работе я использую СанПин 2.1.3.2630-10 "Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность", а также СанПин 1.2.731-99 "Безопасность работы с микроорганизмами 3 и 4 групп патогенности и гельминтами".

Санитарно-эпидемиологический режим-комплекс организационных, санитарно-профилактических и противоэпидемических мероприятий, которые предотвращают возникновение внутрибольничной инфекции. Основными элементами комплекса является применение индивидуальных и коллективных защитных средств, соблюдение дезинфекционного режима. Минимальный набор средств индивидуальной защиты-медицинский халат, шапочка, перчатки, очки которые обязательны для использования при работе не только с кровью, но и с любым биологическим материалом. Необходимо избегать уколов и порезов. Все повреждения кожи на руках должны быть обеззаражены и заклеены лейкопластырем. Для пипетирования биожидкости использовать дозаторы или резиновые груши.

Важный этап в предупреждении внутрилабораторного заражения-грамотная транспортировка биоматериала в лабораторию. Материал помещают в надежно закрывающуюся посуду с сопроводительным бланком. Для доставки используют специальные контейнеры, которые затем обрабатываются. Распаковка материала производится в специально отведенном месте. Персонал работает в перчатках. Лабораторная посуда и инструментарий после использования подвергается дезинфекции. Ёмкости для дезрастворов должны быть четко промаркированы и иметь крышки. В маркировке ёмкости указывают: название дезраствора, его концентрацию, назначение и дату приготовления. Выбор метода дезинфекции зависит от особенностей изделия и его назначения.

Дезинфекцию проводят в пластиковых емкостях с крышками. Изделия однократного применения после дезинфекции подлежат утилизации. Сбор в одноразовую герметичную упаковку в "Отходы. Класс Б" в соответствии с требованиями СанПин 2.1.7.2790-10 "Санитарно-эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами". Многоразовая лабораторная посуда (предметные стекла, пипетки, пробки, пробирки, стеклянные палочки и т. д) складывается в течении рабочего дня в емкости с дез.раствором при полном погружении, экспозиция с момента погружения последнего предмета. Остатки удаляют с помощью механических средств. После промывают проточной водой. Затем изделия подвергают дальнейший предстерилизационной очистке и стерилизации. Качество предстерилизационной очистки оцениваю на наличие крови путем постановки азопирамовой пробы. Самоконтроль провожу ежедневно, контролю подвергается не менее 1 % изделий. Результаты проверки заношу в журнал учета контроля предстерилизационной обработки. После предстерилизационной очистки проводят стерилизацию инструментария и посуды. Стерилизации подлежат все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью и биоматериалом.

Влажная уборка помещений лаборатории проводится ежедневно с применением моющих и дезинфицирующих средств, с последующим кварцеванием бактерицидной лампой. Количество отработанных часов лампы учитываю в журнале. Так же ведется учёт генеральных уборок, которые проводятся по утвержденному графику один раз в неделю.

Персонал лаборатории обучен действиям при "Биологических авариях". При проливе или разбрызгивании биоматериала необходимо поставить в известность врача, который определит вид и объём дезинфекционных мероприятий. Все биологические аварии в лаборатории любого профиля подлежат обязательной регистрации в журнал учета случаев микротравм. На рабочих местах находятся аптечки для оказания неотложной помощии.

Общие положения

С целью профилактики инфицирования медицинского персонала лечебно-профилактических учреждений особое значение имеет выполнение требований противоэпидемического режима.

Ответственность за организацию и соблюдение противоэпидемического режима при работе с потенциально опасным материалом возлагается на руководителя клинико-диагностической лаборатории (КДЛ).

Инструктаж среднего и младшего медицинского персонала проводится ответственным за технику безопасности не реже одного раза в квартал.

Инструкция составлена в соответствии с ГОСТом 42-21-2-85 "Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы", а также приказом Минздрава СССР (1989 год) "О мерах по снижению заболеваемости вирусным гепатитом в стране".

I. Основные правила работы в КДЛ

Медицинскому персоналу КДЛ следует избегать контактов кожи и слизистых оболочек с кровью и другими биологическими жидкостями, для чего необходимо:

1. Работать в медицинских халатах, шапочках, сменной обуви, а при угрозе забрызгивания кровью или другими биологическими жидкостями - в масках, очках, клеенчатом фартуке.

2. Работать с исследуемым материалом в резиновых перчатках, все повреждения кожи на руках должны быть закрыты лейкопластырем или напальчником. Избегать уколов и порезов.

3. Проводить разборку, мойку, прополаскивание лабораторного инструментария, посуды после предварительной дезинфекции в резиновых перчатках.

4. В случае загрязнения кожных покровов кровью или другими биологическими жидкостями следует немедленно обработать их в течение 2 мин тампоном, обильно смоченным 70% спиртом, вымыть под проточной водой с мылом и вытереть индивидуальным тампоном. При загрязнении перчаток кровью их протирают тампоном, смоченным 3% раствором хлорамина, 6% раствором перекиси водорода.

При подозрении на попадание крови на слизистые оболочки их немедленно обрабатывают струей воды, 1% раствором протаргола; рот и горло прополаскивают 70% спиртом, или 1% раствором борной кислоты, или 0,05% раствором перманганата калия.

6. Запрещается пипетирование крови ртом; следует использовать автоматические пипетки, а при их отсутствии - резиновые груши.

7. Поверхность рабочих столов в конце каждого рабочего дня подвергается дезинфекции, а в случае загрязнения биологическим материалом - немедленно.

II.Способы взятия крови

Взятие крови следует проводить в резиновых перчатках, соблюдая правила асептики, обрабатывая перчатки 70% спиртом перед каждым взятием. Перед проколом кожу пальца обследуемого обрабатывают стерильным тампоном (шариком из ваты), смоченным 70% спиртом.

После взятия крови к раневой поверхности прикладывают новый стерильный тампон, смоченный 70% спиртом. Извлекать скарификаторы следует только с помощью пинцета, хранящегося в растворе дезинфекционного средства.

Стерильные тампоны хранятся в упаковке из бумаги, указанной в ГОСТе 42-21-2-85, в количестве не более 20 штук. Стерильные лабораторные инструменты хранятся в той же упаковке, в которой проводилась их стерилизация. Существует несколько вариантов взятия крови для гематологического исследования.

I вариант. После прокола пальца несколько капель крови (не менее 3-4), спускают на индивидуальное предметное (часовое) стекло, перемешивают и используют для работы.

II вариант. Кровь набирают в индивидуальные стерильные, предварительно выверенные капилляры объемом 20 мкл и капилляры Панченко непосредственно с поверхности кожи проколотого индивидуальным копьем пальца пациента.

III вариант. Кровь в количестве 40 мкл набирают стерильным индивидуальным капилляром Панченко, предварительно смоченным цитратом в соотношении цитрата и крови 1: 4 по объему.

IV вариант. После прокола кожи пальца 6-8 капель крови спускают в пластиковую пробирку, в которую предварительно внесено небольшое (на кончике глазной лопаточки) количество трилона Б.

Пробирку с кровью тщательно перемешивают, вращая ее между ладонями. Разлив крови пипетками по пробиркам осуществляется в лаборатории.

Таблица N 1. Приготовление моющего раствора

Таблица N 1

Компонент	Количество компонентов для приготовления 1 л моющего р-ра	Применение
Моющее средство "Биолот", г		При механизированной очистке (струйный метод)
Вода питьевая, мл
Моющее средство "Биолот", г
Вода питьевая, мл		При ручной очистке
Раствор перекиси водорода:		При механизированной очистке (струйный метод, использование ультразвука) и ручной очистке
Моющее средство "Прогресс", "Айна", "Астра", "Лотос", "Лотос-автомат", "Маричка", г		При механизированной очистке с использованием ультразвука
Вода питьевая, мл (см3)

Примечание. При использовании моющего средства, содержащего 0,5% перекиси водорода и 0,5% синтетического моющего средства "Лотос" и "Лотос-автомат", применяют ингибитор коррозии - 0,14% олеат натрия (1,4 г на 1 л раствора). В скобках указано количество питьевой воды в мл.

Таблица N 2. Предстерилизационная очистка (ручной способ)

Таблица N 2

	Режим очистки
Процесс при проведении очистки	Температура, С°		Время выдержки, мин		Применяемое оборудование
	Номинальное значение	Предельное отклонение	Номинальное значение	Предельное отклонение
Замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия при применении моющего средства "Биолот"					Бачок, ванна, раковина
То же при применении моющего средства "Прогресс", "Астра", "Лотос", "Лотос-автомат", "Айна", "Маричка"
Мойка каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша и ватно-марлевого тампона
Ополаскивание проточной водой:
При применении моющего средства "Биолот"					Ванна, раковина с устройством для струйной подачи
При применении моющего средства "Маричка", "Прогресс"
При применении средств "Астра", Лотос", "Айна", "Лотос-автомат"
Ополаскивание дистиллированной водой					Бак, ванна
Сушка горячим воздухом			До полного исчезновения влаги		Сушильный шкаф

Примечания:

1. Температура раствора в процессе мойки не поддерживается.

2. Моющий раствор перекиси водорода с синтетическими моющими средствами, в том числе "Лотос", "Лотос-автомат", с ингибитором коррозии можно использовать в течение суток с момента изготовления, если цвет раствора не изменился. Неизмененный раствор можно подогревать до 6 раз, в процессе подогрева концентрация перекиси водорода существенно не изменяется.

3. Раствор моющего средства "Биолот", применяемый как при ручном, так и при механическом способе, используется однократно, так как при повторном использовании фермент, входящий в состав моющего средства, разрушается в процессе очистки.

III. Дезинфекция лабораторного инструментария, посуды, спецодежды, биоматериала, оборудования

Лабораторные инструменты, иглы, капилляры, предметные стекла, пробирки, меланжеры, счетные камеры, кюветы фотоэлектроколориметра, пипетки, наконечники, резиновые груши, баллоны и т.д., посуда после каждого использования должны подвергаться дезинфекции.

1. Использованные изделия промывают в емкости с водой. Промывные воды обеззараживают кипячением в течение 30 мин или засыпают сухой хлорной известью, известью белильной термостойкой, нейтральным гипохлоритом кальция (НГК) в соотношении 200 г на 1 л, перемешивают и обеззараживают в течение 60 мин. Промытые изделия кипятят в закрытой емкости в воде в течение 30 мин или в 2% растворе соды в течение 15 мин. (В случае кипячения изделий в 2% растворе соды дальнейшая предстерилизационная очистка не проводится.)

2. Лабораторные инструменты могут быть обеззаражены погружением в раствор с дезинфицирующим раствором.

В качестве дезинфицирующих используются следующие растворы: 3% раствор хлорамин, 6% перекись водорода, 6% перекись водорода с 0,5% моющего средства ("Прогресс", "Астра". "Айна", "Лотос", "Лотос-автомат"), 4% формалин, 0,5% НГК, 0,5% сульфохлорантин; время обеззараживания 60 мин.

Дезинфицирующие растворы используются однократно.

Емкости для проведения дезинфекции должны быть четко маркированы, иметь крышки.

При дезинфекции изделий, имеющих внутренние каналы, растворы дезинфекционного средства в объеме 5-10 мл пропускают через канал с помощью груши для удаления остатков крови, сыворотки и пр., после чего изделия полностью погружают в дезинфицирующий раствор во вторую емкость.

При погружении инструментов в горизонтальном положении полости каждого инструмента должны быть заполнены дезинфицирующим раствором.

3. Каждая партия сухих хлорсодержащих дезинфектантов перед использованием должна подвергаться контролю на содержание активного хлора.

4. Посуду, соприкасающуюся с кровью или сывороткой и не предназначенную для последующего контакта с обследуемым, после дезинфекции промывают проточной водой для полного удаления дезинфектанта и проводят необходимую технологическую обработку.

5. Блоки кювет анализатора ФП, кюветы измерительной аппаратуры, пластиковые пробирки и т.д. обеззараживают только 6% раствором перекиси водорода и промывают проточной водой.

6. С предметных стекол с фиксированным и окрашенным мазком крови после проведения микроскопии удаляют остатки иммерсионного масла, стекла кипятят в мыльном растворе не менее 15 мин до полного отхождения краски, затем промывают проточной водой, подсушивают на воздухе и протирают.

7. Остатки крови, мочи, спинномозговой жидкости и т.д., пробы, содержащие разведенную сыворотку без добавления кислот, щелочей сливают в специальную тару и обеззараживают сухой хлорной известью, известью белильной термостойкой, НГК в соотношении 1:5 в течение 1 часа. При удалении сгустков следует предварительно отделить материал металлическим шпателем, который затем обеззараживают. Посуду из-под мочи, кала обрабатывают по описанной выше методике, но ее можно не подвергать стерилизации.

8. При загрязнении кровью или секретами мебели, инвентаря, приборов их следует немедленно дважды протереть ветошью, ватными или марлевыми тампонами, обильно смоченными дезинфицирующими растворами.

Использованную ветошь сбрасывают в специально выделенную емкость с дезинфицирующим раствором, маркированную "Для дезинфекции использованной ветоши".

9. При загрязнении кровью или секретами спецодежды ее снимают, предварительно обработав дезинфицирующим раствором участок загрязнения.

Стирка спецодежды на дому категорически запрещается. Смена спецодежды должна осуществляться не менее 2 раз в неделю.

10. Перчатки после окончания работы обеззараживают погружением в 3% раствор хлорамина или 6% раствор перекиси водорода на 1 час или кипячением в течение 30 мин.

11. Одноразовый инструментарий (плашки, наконечники, автоматические пипетки и т.д.) обеззараживают и утилизируют в паровом стерилизаторе при 2,0 кг/2 (132° С) в течение 60 мин.

IV. Предстерилизационная очистка

После дезинфекции лабораторный инструментарий, соприкасающийся с раневой поверхностью или слизистыми оболочками обследуемого, подлежит обязательной предстерилизационной очистке и стерилизации.

Предстерилизационную очистку проводят с применением моющих растворов (табл.1 и 2).

Количество предстерилизационной очистки изделий оценивают на наличие крови путем постановки бензидиновой или амидопириновой пробы, на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющего вещества - путем фенолфталеиновой пробы.

Самоконтроль в КДЛ проводят ежедневно, контролю подвергают не менее 1% от одновременно обработанных изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц.

При положительной пробе на кровь или моющее средство всю группу контролируемых изделий подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов.

После дезинфекции и предстерилизационной очистки проводят стерилизацию игл, шприцев, пробирок, пипеток, стеклянных палочек, стекол, меланжеров и т.д.

V. Режимы и условия стерилизации указаны в таблицах 3-5

Таблица N 3. Режим и условия стерилизация воздушным методом

Таблица N 3

Режим стерилизации
Рабочая температура в стерилиз. камере, С°		Время выдержки, мин		Применя- емость		Срок сохранения стерильности	Применя- емое оборудо- вание
Номина- льное значение	Преде- льное откло- нение	Номина- льное значение	Преде- льное откло- нение
				Для изделий из металла, стекла, силико- новой резины	Стерилизации подвергают сухие изделия. Стерилизацию проводят в упаковке из бумаги мешочной непропитанной и бумаги непропитанной и влагопрочной, бумаги для упаковки продуктов на автоматах марки Е, бумаги упаковочной высокопрочной, бумаги двухслойной крепированной или без упаковки в открытых емкостях	Изделия, простерилизо- ванные в бумаге, могут храниться 3 сут. Изделия, простерилизо- ванные без упаковки, должны быть использованы непосредст- венно после стерилизации	Воздушный стерили- затор

Примечания:

1. Капилляры, микропипетки, иглы-копья, предметные стекла помещают в бумажную упаковку в количестве не более 5-10 штук. Бумажная упаковка может быть использована не более 5 раз.

2. Иглы-копья можно стерилизовать в конических пробирках в количестве 5-10 штук. Копья укладывают острием вниз, пробирку закрывают сверху упаковочной бумагой.

3. Эффективность воздушной стерилизации зависит от равномерного распределения горячего воздуха в стерилизационной камере. При стерилизации изделий в воздушных стерилизаторах, не имеющих принудительной вентиляции (СС-200, СС-200М, ШСС-80), плотность загрузки не должна превышать 50% площади полок.

4. Стерилизуемые изделия необходимо укладывать горизонтально поперек пазов кассет, полок.

6. Режим работы стерилизатора контролируется ежедневно одним из химических индикаторов (винная кислота, гидрохинон, тиомочевина), индикаторы размещают на каждой полке в 5 точках: 1 - в центре, остальные - слева и справа у двери и задней стенки.

Таблица N 4. Стерилизация паровым методом

Таблица N 4

Давление пара в стерилизационной камере, кГс/см		Рабочая температура в стерилизационной камере, С°		Время стерилизационной выдержки, мин
Номина- льное значение	Предельное отклонение	Номина- льное значение	Предельное отклонение	При ручном и полуавтоматическом управлении не менее	При автоматическом управлении
					Номина- льное значение	Предельное отклонение
Применяемость		Условия проведения стерилизации		Срок сохранения стерильности		Применяемое оборудование
Для изделий из коррозионно-устойчивого металла, стекла, изделий из текстильных материалов, резины. Для изделий из резины, латекса и отдельных полимерных материалов		Стерилизацию производят в стерилизационных коробках без фильтров или с фильтрами, в двойной мягкой упаковке из бязи, в пергаменте, бумаге мешочной, непропитанной, бумаге мешочной влагопрочной, бумаге для упаковки продуктов на автоматах марки Е, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге двухслойной крепированной		Изделия, простерилизованные в стерилизационных коробках без фильтров, в двойной мягкой упаковке из бязи или пергамента, в бумаге непропитанной и т.д. могут храниться 3 сут. в стерилизационных коробках с фильтром - 20 сут		Паровой стерилизатор

Примечание к табл. N 4 . Режим работы стерилизатора контролируется химическими индикаторами (Д-манноза, никотинамид, бензойная кислота), запаянные в трубочки индикаторы укладывают в каждый бикс.

Таблица N 5. Стерилизация химическим методом (растворами)

Таблица N 5

Стерилизующий агент	Режим стерилизации
	Температура, С°		Время выдержки, мин
	Номинальное значение	Предельное отклонение	Номинальное значение		Предельное отклонение
	Не менее 18
	Не менее 18
Стерилизующий агент	Вид материала	Способ обработки		Применяемое оборудование
Перекись водорода 6% (по активнодействующему веществу)	Для изделий из полимерных материалов, резины, стекла, коррозийно- устойчивых металлов	Стерилизация должна проводиться при полном погружении изделия в раствор на время стерилизационной выдержки, после чего изделие промывают стерильной водой двукратно. Срок хранения простерилизованного изделия в стерильной емкости (стерилизационная коробка), выложенной стерильной простыней, 3 сут		Закрытые емкости из стекла, пластмассы или покрытые эмалью (эмаль без повреждений)
Раствор "Дезоксон" N 1 (по надуксусной кислоте)
Глютаровый альдегид фирмы "Реанал" (Венгрия), 2,5% (по активнодействующему веществу) рН 7,0-8,5

Примечания к табл.5:

1. 6% раствор перекиси водорода и 1% раствор "Дезоксон" N 1 повторно использовать для стерилизации изделий медицинского назначения нельзя.

2. Температура в процессе стерилизации не поддерживается.

3. Стерилизацию и промывание проводят в асептических условиях, соответствующих требованиям, предъявляемым к чистым операционным.

VI. Санитарное содержание помещений

1. Все помещения, оборудование, инвентарь должны содержаться в идеальной чистоте.

2. Влажная уборка помещений должна осуществляться с применением моющих и дезинфекционных средств не менее 1 раза в сутки, а при необходимости чаще.

3. Один раз в месяц в помещениях, где проводится работа с нативной кровью, сывороткой, делают генеральную работу с использованием 3% раствора хлорамина, хлорной извести, извести белильной термостойкой.

Во время генеральной уборки тщательно моют стены, оборудование, мебель, проводят очистку полов от наслоений, пятен и т.д.

Генеральные уборки проводят по утвержденному графику.

VII. Транспортировка и хранение биоматериала

1. При транспортировке биоматериал помещают в пробирки, закрывающиеся резиновыми пробками, сопроводительную документацию - в упаковку, исключающую возможность ее загрязнения биоматериалом.

Бланки направлений помещать в пробирку с кровью запрещается.

2. Транспортировка биоматериала осуществляется в закрытых контейнерах, подвергающихся дезинфекционной обработке.

3. При открывании пробок бутылок, флаконов, пробирок с кровью, плазмой или другими секретами следует не допускать разбрызгивания содержимого.

4. При хранении потенциально инфицированных материалов в холодильнике необходимо поместить их в полиэтиленовый пакет.

В случае подтверждения зараженности биоматериала размораживание холодильника совмещают с его дезинфекцией.

5. При аварии (разбрызгивании зараженного биоматериала и т.д.) помещение, где произошла авария, тщательно дезинфицируют.

Объем и вид дезинфекции определяет руководитель КДЛ.

Если авария произошла на центрифуге, то дезинфекционные мероприятия начинают проводить не ранее чем через 30-40 мин, то есть после осаждения аэрозоля. Все случаи аварий и принятые в связи с этим меры подлежат обязательной регистрации во внутрилабораторном журнале по технике безопасности.

6. Для ликвидации последствий аварии в лаборатории необходимо наличие аптечки, содержащей стерильные ватные и марлевые тампоны, 70% спирт, 1% раствор нитрата серебра, 1% раствор протаргола, 0,05% раствор перманганата калия, 1% спиртовой раствор йода, лейкопластырь.

Текст документа сверен по:
Справочник заведующего клинико-диагностической
лабораторией, 2000 год

Лаборатория работает, строго соблюдая санитарно-эпидемиологический режим, согласно следующим нормативным документам:

У каждого лаборанта несколько комплектов спец. одежды на каждый день, индивидуальные средства защиты (шапочка, щиток, маска, фартук, перчатки). Забор крови производится одноразовыми скарификаторами и в одноразовые контейнеры.

Весь отработанный материал подвергается дезинфекции в промаркированных емкостях. В лаборатории используются следующие дезинфицирующие средства:

• 1) Амиксидин - 0,5% раствор;
• 2) Венделин - 1% раствор; Велтолен - 1% раствор;
• 3) Сухой гипохлорит кальция;
• 4) Перекись водорода - 6% раствор;
• 5) Спирт - 70%.

Обработка капилляров и пинцетов проводится в 3 этапа: дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация.

После предстерилизационной обработки капилляры и пинцеты подсушиваются, и проводятся пробы на скрытую кровь (азапирамовая), и остатки моющего средства (фенолфталеиновая). Результат проведения проб ежедневно записываем в журнал учёта качества предстерилизационной обработке (Ф.366). Контроль за качеством проведения предстерилизационной обработки проводит старший лаборант 1раз в неделю, главная медицинская сестра и санэпидемиолог больницы один раз в квартал.Остатки крови и другие биологические жидкости сливают в специальные промаркированные емкости, засыпают сухим гипохлоритом в соотношении 1:5, перемешивают, экспозиция-1 час.

Результаты контроля качества предстерилизационной обработки за 2012-2013г.

Проведение контроля качества предстерилизационной очистки (азопирамовая проба):

В лаборатории проводится 3 вида уборок помещений: текущая с последующим кварцеванием, заключительная и генеральная (проводится в кабинетах, в которых проходит работа с ПБА- 1раз в неделю, в других кабинетах - 1раз в месяц).

Весь уборочный инвентарь нужно обеззаразить в дез. растворе в течение 1 часа. Затем промыть и просушить. Отметить в «Журнале генеральных уборок» о проведении уборки с росписью. Кварцевание кабинетов, где проходит работа с биологическим материалом, проводится после текущей уборки 30 минут затем, через каждые 2 часа по 15мин., в других помещениях - в начале рабочего дня и в конце.

Каждый день заполняются журналы: журнал учёта работы бактерицидных ламп, журнал регистрации температурного режима хранения медицинских препаратов, журнал учёта результатов контроля работы воздушных, паровых стерилизаторов (ф.257у), журнал трёхступенчатого контроля по технике безопасности.